FastStart™ Taq DNA聚合酶是一种多功能酶,可用于多种应用和多种仪器平台。这种改良的热稳定重组Taq DNA聚合酶在低于+75℃的温度下是无活性的,但在+95℃下通过2至4分钟的热活化步骤即可活化。由于它在低温下无活性,因此FastStart™ Taq DNA聚合酶不会对可能在此温度下形成的非特异性引物-模板杂交体进行延伸。由于酶在PCR准备期间和初始变性步骤之前都能保持无活性,因此FastStart™ Taq DNA聚合酶是热启动PCR的理想工具。 Show
法律信息购买者须知:有限许可 FastStart is a trademark of Roche 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Abstract本发明属于基因工程领域,公开了一种高保真DNA聚合酶、编码该高保真DNA聚合酶的基因,以及该高保真DNA聚合酶的制备方法,及其在核酸扩增中的应用。本发明公开的高保真DNA聚合酶,其具有SEQ ID NO:1所示的氨基酸序列,或者SEQ ID NO:1所示的氨基酸序列经取代、缺失或添加一个或多个氨基酸获得的氨基酸序列。该高保真DNA聚合酶能够扩增高GC含量的核酸模板、样品纯度较低的核酸模板,同时,也能实现对极低的模板量的扩增,大幅提高了高保真DNA聚合酶的灵敏度和扩增效率,同时具有较高的保真性,适合各类PCR及对扩增保真性要求较高的实验,也适合作为PCR扩增试剂盒中的高保真DNA聚合酶。 Description一种高保真DNA聚合酶及其制备和应用 技术领域 [0001] 本发明属于基因工程领域,涉及一种高保真DNA聚合酶及其制备和应用。 背景技术 [0002] DNA聚合酶广泛应用于分子生物学研究中,如DNA测序、标记、突变和核酸扩增等反 应。耐热DNA聚合酶由于其热稳定性,在核酸高温变性的条件下不会失活,是目前核酸扩增 的常用酶。根据序列的不同,DNA聚合酶可以分为六大族:A、B、C、D、X和Y,耐热DNA聚合酶主 要属于A族和B族,并具有相似的生物学性质。A族DNA聚合酶的代表是Taq DNA聚合酶,该聚 合酶分离自Thermus aquaticus YT-I的基因组,具有5 ’ -3 ’的DNA外切酶活性和5 ’ -3 ’ DNA聚 合酶活性,其菌株生长于75°C左右的温泉中,由于其能耐受高温变性,自发现后被广泛应用 于PCR反应,目前已被开发成多种试剂盒;后来的研究又从其他物种中分离出了多种A族DNA 聚合酶,但由于其不具有3’-5’的外切酶校正活性,容易在扩增时掺入错误的碱基,导致不 能忠实地扩增模板,直到B族DNA聚合酶的发现,才使得高保真地扩增模板成为可能。B族DNA 聚合酶主要分离自古细菌,包括广古菌、泉古菌、纳古菌和初古菌,其具有更高的热稳定性, 同时其3’-5’外切酶校正活性能识别错误掺入延伸链中的碱基,并将其切下,利用DNA聚合 酶活性添加为与模板互补的碱基,从而保证了新扩增链与模板的高度一致性。 [0003] 超嗜热古菌具有严格厌氧和超嗜热生长的特性,如Pyrodi ctium和Methanopyrus 属的物种能在110°c生长,而低于80°C则不能生长;从大西洋中脊3650米的超热烟囱中分离 的Pyrolobus fumarii是目前已知最耐热的古菌,其能在高达113°C的高温条件下增值,而 低于90°C则停止生长。目前已经从Pyrococcus和Thermococcus属中分离出了许多DNA聚合 酶,某些DNA聚合酶在极高的温度下仍能保持稳定,被应用于分子生物学研究,尤其是核酸 扩增中。其中,Pfu DNA聚合酶是一种来源于Pyrococcus furiosus的热稳定的DNA聚合酶, 具有5 ’ -3 ’ DNA聚合酶活性和3 ’ -5 ’的外切酶活性。由于Pfu DNA聚合酶有3 ’ -5 ’的外切酶活 性,因此在核酸扩增过程中出错的机率大大降低,保真性约为Taq DNA聚合酶的6倍。目前, Pfu DNA聚合酶通常作为首选的高保真DNA聚合酶,用于核酸的高保真扩增,但是,在实际应 用过程中,Pfu DNA聚合酶对引物和样品的结构、纯度和浓度要求比较高,反应灵敏度较低, 扩增效率较低,限制了Pfu DNA聚合酶的使用和推广。 发明内容 [0004] 有鉴于此,本发明的目的在于提供一种高灵敏度、高扩增效率的高保真DNA聚合酶 及其制备和应用。 [0005] 为了实现本发明的目的,本发明采用如下的技术方案: [0006] 本发明提供了一种高保真DNA聚合酶,命名为Tco DNA聚合酶,其具有(Ι)、(Π)所 示的氨基酸序列中任意一个: [0007] (I)具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列; [0008] (Π )具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列经取代、缺失或添加一个或多个氨基酸 获得的氨基酸序列。 [0009] 本发明提供了一种Tco DNA聚合酶在核酸扩增中的应用,Tco DNA聚合酶具有(I)、 (Π )所示的氨基酸序列中任意一个: [0010] (I)具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列; [0011] (Π )具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列经取代、缺失或添加一个或多个氨基酸 获得的氨基酸序列。 [0012] 本发明提供了一种编码Tco DNA聚合酶的DNA分子,其具有I、Π所示的核苷酸序列 中任意一个: [0013] I具有SEQ ID NO:2所示的核苷酸序列; [0014] Π具有SEQ ID NO: 2所示的核苷酸序列经取代、缺失或添加一个或多个碱基获得 的核苷酸序列; [0015] Tco DNA聚合酶具有(Ι)、(Π)所示的氨基酸序列中任意一个: [0016] (I)具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列; [0017] (Π)具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列经取代、缺失或添加一个或多个氨基酸 获得的氨基酸序列。 [0018] 本发明提供了 一种重组载体,其含有编码Tco DNA聚合酶的DNA分子,该DNA分子具 有具有I、Π所示的核苷酸序列中任意一个: [0019] I具有SEQ ID NO:2所示的核苷酸序列; [0020] Π具有SEQ ID NO: 2所示的核苷酸序列经取代、缺失或添加一个或多个碱基获得 的核苷酸序列; [0021] Tco DNA聚合酶具有(I)、(Π)所示的氨基酸序列中任意一个: [0022] (I)具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列; [0023] (Π)具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列经取代、缺失或添加一个或多个氨基酸 获得的氨基酸序列。 [0024] 优选地,上述的重组载体为含有T7启动子的重组载体。 [0025] 本发明提供了一种PCR扩增试剂盒,其含有Tco DNA聚合酶,该Tco DNA聚合酶具有 (I)、( Π )所示的氨基酸序列中任意一个: [0026] (I)具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列; [0027] (Π)具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列经取代、缺失或添加一个或多个氨基酸 获得的氨基酸序列。 [0028] 本发明还提供一种高保真DNA聚合酶的制备方法,包括以下步骤: [0029] 获得具有编码如(I)或(Π)所限定的氨基酸序列的DNA分子; [0030] 取上述DNA分子与表达载体融合,构建重组表达载体; [0031 ]取上述重组表达载体转入宿主细胞,获得转化体; [0032] 诱导上述转化体表达融合蛋白,经分离纯化,获得高保真DNA聚合酶; [0033] (I)为:具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列; [0034] (Π)为:具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列经取代、缺失或添加一个或多个氨基 酸获得的氨基酸序列。 [0035] 优选地,具有编码如(I)或(Π)所限定的氨基酸序列的DNA分子,具体为具有Ι、Π 所示的核苷酸序列中任意一个: [0036] I具有SEQ ID NO:2所示的核苷酸序列; [0037] Π具有SEQ ID NO: 2所示的核苷酸序列经取代、缺失或添加一个或多个碱基获得 的核苷酸序列。 [0038] 优选地,获得具有编码如(I)或(Π)所限定的氨基酸序列的DNA分子,具体为从超 嗜热古菌Thermococcus coalescens中分离、重组构建出上述的DNA分子;上述的超嗜热古 菌购自日本微生物菌种保藏中心,其保藏编号为JCM: 12540,其分离自伊豆小笠原海沟水耀 海山的超高温海水中,为〇. 5-2μΜ的不规则球形,在指数生长期时,能融合为约5μΜ的融合细 胞;该细菌生长于57-90 °C,pH值为5.2-8.7,其最适pH值为6.5,最佳生长温度为87 °C,具有 超强嗜热生长特性; [0039] (I)为:具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列; [0040] (Π)为:具有SEQ ID NO: 1所示的氨基酸序列经取代、缺失或添加一个或多个氨基 酸获得的氨基酸序列。 [0041] 优选地,一种高保真DNA聚合酶的制备方法中所用到的宿主细胞,为原核系统宿主 细胞。 [0042] 优选地,一种高保真DNA聚合酶的制备方法中所用到的宿主细胞,为大肠杆菌宿主 细胞。 [0043] 优选地,一种高保真DNA聚合酶的制备方法中的纯化操作,具体为,采用凝胶介质 纯化。 [0044] 在本发明的一些实施例中,一种制备Tco DNA聚合酶的方法,具体为: [0045] (1)通过同源比对Thermococcus属不同DNA聚合酶基因核苷酸序列,以相似性较高 的区段设计引物,扩增Thermococcus coalescens DNA聚合酶基因片段,再根据得到的序列 信息,不断扩增得到基因的全长序列如SEQ ID NO:3所示的核苷酸序列; [0046] (2)分析上述基因结构,扩增成熟蛋白编码序列,通过重叠PCR得到如SEQ ID N0:2 所示的基因片段,构建至含T7启动子的载体上,得到重组载体; [0047] (3)将上述重组载体转化至宿主细胞E.coli Rosetta(DE3)中,得到能生产该高保 真DNA聚合酶的转化体; [0048] (4)扩大培养该转化体,诱导后用于制备该高保真DNA聚合酶; [0049] (5)利用镍凝胶介质和肝素层析柱依次纯化,获得该高保真DNA聚合酶。 [0050] 本发明提供了一种高保真DNA聚合酶及其制备方法和在核酸扩增中的应用。该高 保真DNA聚合酶具有SEQ ID N0:1所示的氨基酸序列,或者SEQ ID N0:1所示的氨基酸序列 经取代、缺失或添加一个或多个氨基酸获得的氨基酸序列。实验数据表明,采用本发明所公 布的制备方法所制备得的高保真DNA聚合酶的纯度达95%以上,与Pfu高保真DNA聚合酶相 比,本发明提供的高保真DNA聚合酶能够扩增高GC含量的核酸模板、样品纯度较低的核酸模 板,同时,也能实现对极低的模板量的扩增,大幅提高了高保真DNA聚合酶的灵敏度和扩增 效率,同时具有较高的保真性,适合各类PCR及对扩增保真性要求较高的实验,也适合作为 PCR扩增试剂盒中的高保真DNA聚合酶。 附图说明 [0051 ]图1示Tco DNA聚合酶的纯化结果;其中,泳道1示纯化的Tco DNA聚合酶;泳道M示 蛋白分子量Marker; [0052] 图2示Tco DNA聚合酶扩增不同长度的核酸片段的结果;其中,泳道M示DNA分子量 Marker;泳道1示人基因组800bpP_Actin片段;泳道2示人基因组1.3kb0-globin片段;泳道3 示人基因组1.5kb0-globin片段;泳道4示人基因组3 . Okb0-globin片段;泳道5示4. IkbP-globin片段;泳道6示λ基因组Skb片段; [0053] 图3示Tco DNA聚合酶和Pfu DNA聚合酶扩增高GC含量核酸模板和含抑制剂模板的 结果;其中,1〜4示Tco DNA聚合酶扩增结果;a〜d示PfuDNA聚合酶扩增结果;泳道M示DNA分 子量Marker;泳道1示人全血237bp片段;泳道2示大肠杆菌菌液1.5kbl6srDNA片段;泳道3示 Thermus thermophilus HB8基因2kb片段;泳道4示人基因组1.5kb片段;泳道a示人全血扩 增237bp片段;泳道b示大肠杆菌菌液1 · 5kbl6srDNA片段;泳道c示Thermus thermophiIus HB8基因2kb片段;泳道d示人基因组1.5kb片段; [0054] 图4示Tco DNA聚合酶和Pfu DNA聚合酶扩增不同模板量的pUC19质粒的结果;其中 1〜5示Tco DNA聚合酶扩增结果;6〜10示Pfu DNA聚合酶扩增结果;泳道M示DNA分子量 Marker;泳道 1 示IOng的pUC19;泳道2示Ing的pUC19;泳道3示0 · Ing的pUC19;泳道4示0 · Olng 的PUC19;泳道5示0. OOlng的pUC19;泳道6示IOng的pUC19;泳道7示Ing的pUC19 ;泳道8示 0 · Ing的pUC19;泳道9示0 · Olng的pUC19;泳道 10示0 · OOlng的pUC19; [0055] 图5示Tco DNA聚合酶和Pfu DNA聚合酶扩增不同模板量的人基因组DNA的结果;其 中1〜4示Tco DNA聚合酶扩增结果;5〜8示Pfu DNA聚合酶扩增结果;泳道M示DNA分子量 Marker;泳道1示25ng的人基因组1.3kb片段;泳道2示IOng的人基因组1.3kb片段;泳道3示 5ng的人基因组1.3kb片段;泳道4示Ing的人基因组1.3kb片段;泳道5示25ng的人基因组 1.3kb片段;泳道6示IOng的人基因组1.3kb片段;泳道7示5ng的人基因组1.3kb片段;泳道8 示Ing的人基因组1.3kb片段; [0056] 图6示不同DNA聚合酶扩增错误率;其中1示Taq DNA聚合酶;2示Pfu DNA聚合酶;3 示Tco DNA聚合酶。 具体实施方式 [0057] 本发明公开了一种高保真DNA聚合酶,Tco DNA聚合酶,以及所述的高保真DNA聚合 酶的制备方法和在核酸扩增中的应用。本领域技术人员可以参考本文内容,获得所述的高 保真DNA聚合酶,实现其应用,特别需要指出的是,所有类似的替换和改动对本领域技术人 员来说是显而易见的,它们都被视为包括在本发明内。本发明的制备方法及应用已经通过 较佳的实施例进行了描述,相关人员明显能在不脱离本发明内容、精神和范围内对本文制 备方法和应用进行改动或适当变更与组合,来实现和应用本发明技术。 [0058] 本发明提供的一种高保真DNA聚合酶及其制备和应用中所用到的试剂及原料均可 由市场购得。 [0059] 为了使本技术领域的技术人员能够更好地理解本发明的技术方案,下面结合实施 例,进一步阐述本发明: [0060] 实施例1编码Tco DNA聚合酶的DNA分子的获得 [0061 ] 菌种Thermococcus coalescens,购买于日本微生物菌种保藏中心,其保藏编号为 JCM: 12540。将购买的菌种以12000rpm离心5min,弃上清;细胞沉淀,参照Promega公司的 Wizard”。Genomic DNA Purification kit提取基因组DNA,其简要步骤如下: [0062] 细胞沉淀以600yL Nuclei Lysis Solution重悬,80°C水浴5min裂解细胞;冷却至 室温后,加入200yL Protein Preciptitation Solution,震荡混勾,冰浴5min;12000rpm离 心5min;吸取上清至另一个干净的离心管,加入600yL异丙醇,混匀后冰浴IOmin; 12000rpm 离心5min;核酸沉淀以700yL70%乙醇洗涤两次,12000rpm离心5min后,弃上清,室温干燥核 酸沉淀IOmin至无酒精味,加入50yL TE溶解,即获得该菌种的基因组DNA。 [0063] 获得的Thermococcus coalescens基因组DNA未进行全基因组测序,因此无法得到 其DNA聚合酶的基因序列。通过BLAST相似性分析得到同属已测序菌种DNA聚合酶序列相似 度高的区域,设计引物调取Tco DNA聚合酶编码序列。从NCBI数据库中搜索已测序古菌DNA 聚合酶全长基因及其上下游Ikb左右核苷酸序列,使用Clustal W软件比对Thermococcus gammatolerans EJ3、Pyrococcus yayanosii CHl、Thermococcus kodakarensis KODl、 Thermococcus onnurineus NAKThermococcus sibiricus MM739序列,设计引物: [0064] 引物BamHITcoF:具有如SEQ ID NO:5所示的核苷酸序列; [0065] 引物Tco493R:具有如SEQ ID N0:6所示的核苷酸序列; [0066] 引物Tco3085F:具有如SEQIDN0:7所示的核苷酸序列; [0067] 引物TcoDownR:具有如SEQ ID N0:8所示的核苷酸序列; [0068] 以提取的该菌种的基因组DNA为模板,按照下列体系分别配制PCR反应液,50yL体 系中包含:上述基因组DNA50ng,引物各400nmol/L,dNTPs200ymol/L, 5 X PrimeSTAR®Biiffer(Mg2+plus)l〇yL,宝生物公司的Prim_eSTAR®HSCI5p.L。PCR 扩增程序为:98°C2min,(94°C IOs ;55°C 20s; 68°C3min)25cycles,68°C 延伸 SmiruPCR 产物电 泳检测,使用引物BamHITcoF+Tco493R扩增得到约2.5kb片段,引物Tco3085F+TcoDownR扩增 得到约3kb片段,分别回收目的条带,并分别使用Taq DNA聚合酶加A后,将所得的两个DNA分 子分别连接至PGM-T载体中,将得到阳性克隆测序确认。 [0069] 将上述测序得到的核苷酸序列,通过NCBI搜索,确认其与Thermococcus和 Pyrococcus属的编码DNA聚合酶B基因相似性最高,与Thermococcus sp.AM4DNA聚合酶B序 列相似性达到79%,说明扩增得到的是Tco DNA聚合酶的编码序列。分析其序列得知,其编码 的DNA聚合酶含有内含肽,且扩增得到的两个序列无法拼接为全长基因。 [0070] 根据测序结果、分析结果再设计引物: [0071] 引物Tco30F:具有如SEQ ID NO:9所示的核苷酸序列; [0072] 以Tco30F和TcoDownR为引物,所提取的菌种基因组DNA为模板,扩增得到约3.5kb 的片段,构建至pGM-T载体后测序,分析序列发现其中还含有内含肽。根据测序结果拼接该 3.5kb片段与由引物BamHITcoF+Tco493R扩增得到的约2.5kb的片段,得到Tco DNA聚合酶全 长基因,其全序列包含6186bp,其序列如SEQ ID N0:3所示,编码的蛋白共2061aa,其氨基酸 序列如SEQ ID NO:4所示。 [0073] 将拼接所得的基因序列与NCBI数据库中其他DNA聚合酶成熟蛋白的编码序列比对 发现,Tco DNA聚合酶基因被三个内含肽分割为四个编码框,去除内含肽后其基因包括 2328bp,编码的成熟蛋白为775aa。 [0074] 根据分析得到的Tco DNA聚合酶成熟蛋白编码序列,设计引物分别扩增四个ORF: [0075] 引物Tcol2R:具有如SEQ ID NO: 10所示的核苷酸序列; [0076] 引物Tco0RF12F:具有如SEQIDN0:ll所示的核苷酸序列; [0077] 引物NTco0RF2R:具有如SEQIDN0:12所示的核苷酸序列; [0078] 引物NTco0RF23F:具有如SEQIDN0:13所示的核苷酸序列; [0079] 引物Tco0RF3R:具有如SEQIDN0:14所示的核苷酸序列; [0080] 引物NTco0RF34F:具有如SEQIDN0:15所示的核苷酸序列; [0081 ] 引物NotITcoWR:具有如SEQ ID NO: 16所示的核苷酸序列; [0082] 以提取得到的菌种基因组DNA为模板,PrimeSTAR扩增不同编码框,其中BamHITcoF 和Tcol2R扩增得到约1.2kb的ORFl,Tco0RF12F和NTco0RF2R扩增得到约250bp的0RF2, NTco0RF23F 和 Tco0RF3R 扩增得到约 150bp 的 0RF3,NTco0RF34F 和 NotITcoWR 扩增得到约 700bp的0RF4。四个ORF分别连接至pGM-T载体,测序后与拼接的全长基因比对,结果显示一 一对应。 [0083] 加相同摩尔量的ORFl、2、3、4片段,以基因两端引物BamHITcoF和NotITcoWR进行重 叠PCR,拼接得到全长编码区,其序列如SEQ ID N0:2所示,其编码的蛋白质的氨基酸序列如 SEQ ID N0:1所示,回收得到的全长约2.3kb片段,所得片段即为编码Tco DNA聚合酶的DNA 分子。 [0084] 实施例2含有编码Tco DNA聚合酶的DNA分子的重组载体的构建 [0085] 将实施例1获得的全长约2.3kb的目的片段以BamH I和Not I进行酶切,连接至同 样酶切的含T7启动子的载体中,转化至DH5a感受态细胞中。 [0086] 通过菌液PCR鉴定、酶切鉴定和测序验证,证实编码Tco DNA聚合酶的基因序列的 正确性,培养验证正确的感受态细胞,并提取质粒,所获得的质粒即为含有编码Tco DNA聚 合酶的DNA分子的重组载体。 [0087] 实施例3表达Tco DNA聚合酶融合蛋白的转化体的制备 [0088] 将实施例2获得含有编码Tco DNA聚合酶的DNA分子的重组载体转化到宿主细胞 E. col i Rosetta(DE3)中,挑取单菌落培养至OD6〇q=0.4,加入IPTG,至其浓度为0. lmmol/L诱 导4h,收集菌体超声破碎,SDS-PAGE电泳检测目的蛋白的表达,发现所制备得的转化体能够 表达Tco DNA聚合酶融合蛋白。 [0089] 实施例4Tco DNA聚合酶的制备 [0090] 将实施例3获得的能够表达Tco DNA聚合酶融合蛋白的转化体菌种,按1:100接种 至500mL含200mL LB培养基的锥形瓶中,加入卡那霉素至其终浓度为30mg/L和氯霉素至其 终浓度为34mg/L,37°C200rpm振荡培养至OD6qq=O . 4,加入IPTG至其终浓度为0. lmmol/L,于 30°(:诱导411;收集诱导后菌液,12000印111离心21^11,弃上清,细胞用2011^的?!1值为7.8, 20mmol/LTris-HCl ,0. lmol/L KCl ,50mmol/L NaCl的buffer A加30mmol/L咪卩坐重悬,于-80 °C冰箱中冻存12h; 37 °C溶解细胞,超声波破碎后于70 °C水浴锅处理30min,12000rpm离心 IOmin;上清过购买于国家生化工程技术研究中心的镍亲和介质,以含400mmol/L咪卩坐的 buffer A洗脱;洗脱液过购买于国家生化工程技术研究中心的肝素亲和介质,以含 200mmol/L、400mmol/L、600mmol/L、lmol/L NaCl的buffer A进行洗脱;收集各蛋白峰,经 SDS-PAGE检测,发现,含200mmol/L NaCl的buffer A能洗脱部分目的蛋白,含400mmol/L NaCl的buffer A大量洗脱目的蛋白,将得到的产物透析至Storage buffer:pH值为7.4, 20mmol/L Tris-HCl,0.ImmoI/L EDTA,0.l%Tween20,0.5%Nonidet P40,0.1mol/L KC1,50% 甘油。 [0091] 结果表明成功获得了Tco DNA聚合酶。SDS-PAGE显示其纯化结果如图I所示:其中, 泳道1示纯化的Tco DNA聚合酶;泳道M示蛋白分子量Marker。由图可得,所获得的Tco DNA聚 合酶的分子量约为90KDa,与其理论大小相一致,采用BandScan软件分析得其纯度达到95% 以上。 [0092] 实施例5Tco DNA聚合酶活性的测定 [0093] 将实施例4制备得的Tco DNA聚合酶以72°C30min掺入的核苷酸量确定其活性,稀 释为2.5uAxL,以荧光探针法测试其3 ’ -5 ’外切酶活性,结果显示Tco DNA聚合酶具有较强的 校正活性,说明其扩增保真性能较好。为了测试Tco DNA聚合酶的热稳定性,将酶于90°C孵 育,取0、1、2、3、4、5、6h处理的酶测DNA聚合酶活性,结果显示Tco DNA聚合酶具有极高的热 稳定性,其90°C半衰期为6h。 [0094] 实施例6Tco DNA聚合酶在核酸扩增中的应用 [0095] 将实施例4制备得的Tco DNA聚合酶应用于核酸扩增。首先,测试该Tco DNA聚合酶 在核酸扩增中的反应条件,以PUC19质粒为模板,设计引物PCR扩增约2.7kb片段确定其反应 的最适pH值及K+、NH4+、Mg2+离子浓度。配制 10 X buff er B: 500mmo 1/L Tris-HCl,pH值为7 · 4 〜8.8,15mmol/L MgCl2,分别添加不同浓度KCl、(NH4)2S〇4,反应体系为20yL,其中含:不同 条件的 10 X buf fer B2yL,2 · 5mmol/L的dNTPsl · 6yL,lOymol/L的引物PAsO · 5yL,lOymol/L的 引物PAaO · 5yL,Tco DNA聚合酶0 · 2yL,15ng/yL的pUC190 · 5yL,按98 °C 2min,(98°C IOs,60 °C 2〇8,68°02111;[11408)2505^168,最后68°(^延伸5111;[11,电泳检测,确定最适1311打61'。根据结果,确 定Tco DNA聚合酶的最适反应条件为 10 X Tco buffer :pH值为8.4,500mmol/L Tris-HCl, 150mmol/L KCl,100mmol/L(NH4)2S04,15mmol/L MgCl2o [0096] 以所述的10 X Tco buffer和实施例4制备得的Tco DNA聚合酶分别扩增:约800bp β-Actin、1.3kb、1.5kb、3. Okb和4. lkb^-globin片段的人基因组DNA和8kb片段的λ基因组, 琼脂糖凝胶电泳结果显示均能很好地扩增得到目的片段。琼脂糖凝胶电泳检测,结果如图2 所示,其中,泳道M示DNA分子量Marker;泳道1示人基因组800bpP_Actin片段;泳道2示人基 因组1.3kb0-globin片段;泳道3示人基因组1.5kb0-globin片段;泳道4示人基因组3. OkbP-globin片段;泳道5示4. lkbP-globin片段;泳道6示λ基因组8kb片段。 [0097] 实施例7Tco DNA聚合酶对高GC含量核酸模板和含抑制剂模板的扩增 [0098] 嗜热微生物为了适应高温环境,其基因组含有较高的GC含量,如Thermus thermophilus HB8基因组GC含量约为70%,对普通PCR反应来说这类模板的扩增存在一定困 难;而有的模板在纯化过程中容易受材料来源中抑制剂污染,导致PCR反应失败,如血液中 抗凝剂Η)ΤΑ、肝素等。 [0099] 为了测试实施例4制备得的Tco DNA聚合酶对此类复杂模板和含抑制剂模板的扩 增效果,以含EDTA的人全血为模板,直接PCR扩增237bp的S0X21非编码片段;以大肠杆菌菌 液为模板扩增16srDNA约1 ·5kb片段;以Thermus thermophilus HB8基因组为模板,扩增其 约2kb高GC片段,其GC含量约72%;以人基因组为模板,扩增其约1.5kb高GC片段,其GC含量约 为65.9%;以购买于天根生化科技(北京)有限公司的Pfu DNA聚合酶为对比例,按各自最适 条件扩增,反应完成后吸取相同量的产物电泳检测。Tco DNA聚合酶均能很好地扩增得到目 的条带,而对比例没有目的条带出现。琼脂糖凝胶电泳检测,结果如图3所示,其中,1〜4示 Tco DNA聚合酶扩增结果;a〜d示Pfu DNA聚合酶扩增结果;泳道M示DNA分子量Marker;泳道 1示人全血237bp片段;泳道2示大肠杆菌菌液I . 5kbl6srDNA片段;泳道3示Thermus thermophi Ius HB8基因2kb片段;泳道4示人基因组1.5kb片段;泳道a示人全血扩增237bp片 段;泳道b示大肠杆菌菌液1.5kbl6srDNA片段;泳道c示Thermus thermophilus HB8基因2kb 片段;泳道d示人基因组1.5kb片段。 [0100] 实施例8不同模板量条件下,Tco DNA聚合酶的扩增能力 [0101] 以PUC19质粒为模版,采用实施例4制备得的Tco DNA聚合酶扩增2.7kb的pUC19质 粒。分别以1〇1^、11^、0.1即、0.01即、0.0011^?1](:19质粒,5(^反应体系,实施例4所制备得 的Tco DNA聚合酶和购买于天根生化科技(北京)有限公司的Pfu DNA聚合酶按各自最适条 件扩增,反应完成后吸取5yL产物电泳检测。琼脂糖凝胶电泳结果显示Tco DNA聚合酶的扩 增灵敏度远高于Pfu DNA聚合酶。电泳检测结果如图4所示,其中1〜5示Tco DNA聚合酶扩增 结果;6〜10示Pfu DNA聚合酶扩增结果;泳道M示DNA分子量Marker;泳道1示IOng的pUC19 ; 泳道2示Ing的pUC19;泳道3示0 · Ing的pUC19;泳道4示0 · Olng的pUC19;泳道5示0 · OOlng的 PUC19;泳道6示IOng的pUC19;泳道7示Ing的pUC19;泳道8示0 · Ing的pUC19;泳道9示0 · Olng 的PUC19;泳道10示0 . OOlng的pUC19。由图4可观察到50yL反应体系扩增质粒模板时,Tco DNA聚合酶能检测到0 .Olng pUC19质粒,而Pfu DNA聚合酶仅在IOng的条件下能扩增该质 粒。 [0102] 实施例9不同模板量条件下,Tco DNA聚合酶的扩增能力 [0103] 以人基因组为模板,采用实施例4制备得的Tco DNA聚合酶扩增人的1.3kb片段。分 别以25即、10即、51^、11^的人基因组0嫩,5(^反应体系,实施例4所制备得的1'(3〇0嫩聚合 酶和购买于天根生化科技(北京)有限公司的Pfu DNA聚合酶按各自最适条件扩增,反应完 成后吸取5yL产物电泳检测。琼脂糖凝胶电泳结果显示Tco DNA聚合酶的扩增灵敏度远高于 Pfu DNA聚合酶。电泳检测结果如图5所示,其中1〜4示Tco DNA聚合酶扩增结果;5〜8示Pfu DNA聚合酶扩增结果;泳道M示DNA分子量Marker;泳道1示25ng的人基因组1.3kb片段;泳道2 示IOng的人基因组1.3kb片段;泳道3示5ng的人基因组1.3kb片段;泳道4示Ing的人基因组 1.3kb片段;泳道5示25ng的人基因组1.3kb片段;泳道6示IOng的人基因组1.3kb片段;泳道7 示5ng的人基因组1.3kb片段;泳道8示Ing的人基因组1.3kb片段。由图5可得Tco DNA聚合酶 能扩增低至5ng人基因组模板,而Pfu DNA聚合酶仅能在最高模板量25ng时得到微弱扩增。 [0104] 实施例IOTco DNA聚合酶保真性测试 [0105] 以蓝白斑的方法测试实施例4所制备得的Tco DNA聚合酶的保真能力,以pUC19质 粒为模板,Tco DNA聚合酶、Taq DNA聚合酶和Pfu DNA聚合酶分别扩增全长质粒,测定各酶 的扩增倍数。扩增倍数d,符合公式:2d=PCR产物量/起始模板量;Dpn I消化模板质粒并酶 切、连接后转化DH5a细胞,涂布含IPTG和显色底物X-Gal的平板,并计数蓝白斑。突变频率 mf,符合公式mf=白斑数/菌落总数。以公式ER=mf/(bp Xd)计算不同DNA聚合酶扩增错误率, DNA聚合酶的保真性为1/ER,错误率越低,其保真性越好。结果表明,Tco DNA聚合酶具有良 好的保真性能,其保真性为Pfu的1.8倍,Taq的9.2倍。实验结果,图6所示为三者的错误率, 其中1示Taq DNA聚合酶;2示Pfu DNA聚合酶;3示Tco DNA聚合酶。Tco DNA聚合酶的错误率 为:1.2 ΧΙΟ—6、Pfu DNA聚合酶的错误率为:2.2 ΧΙΟ—6、Taq DNA聚合酶的错误率为:10.9 X 10一6。根据DNA聚合酶的保真性为1/ER得:Tco DNA聚合酶的保真性为Pfu DNA聚合酶的1.8 倍,为Taq DNA聚合酶的9.2倍。 [0106] 由以上实施例可知,本发明所公开的一种高保真DNA聚合酶,S卩TcoDNA聚合酶,具 有扩增不同模板和片段的能力,同时对复杂模板和含抑制剂模板也能得到较好的结果,且 具有高保真扩增能力,适合各类PCR及对扩增保真性要求较高的实验,也适合作为PCR扩增 试剂盒中高保真DNA聚合酶。 [0107] 以上仅是本发明的优选实施方式,应当指出的是,上述优选实施方式不应视为对 本发明的限制,本发明的保护范围应当以权利要求所限定的范围为准。对于本技术领域的 普通技术人员来说,在不脱离本发明的精神和范围内,还可以做出若干改进和润饰,这些改 进和润饰也应视为本发明的保护范围。 Claims (10)1. 一种高保真DNA聚合酶,其特征在于,其氨基酸序列如SEQ ID NO: 1所示。 2. 如权利要求1所述的高保真DNA聚合酶在核酸扩增中的应用。 3. —种编码如权利要求1所述的高保真DNA聚合酶的DNA分子,其特征在于,其核苷酸序 列如SEQ ID NO:2所示。 4. 一种重组载体,其特征在于,其含有如权利要求3所述的DNA分子。 5. 根据权利要求4所述的重组载体,其特征在于,其为含有T7启动子的重组载体。 6. —种PCR扩增试剂盒,其特征在于,其含有高保真DNA聚合酶;所述的高保真DNA聚合 酶的氨基酸序列如SEQ ID NO: 1所示。 7. —种高保真DNA聚合酶的制备方法,其特征在于,包括以下步骤: 获得具有编码氨基酸序列如SEQ ID NO: 1所示的DNA分子; 取所述DNA分子与表达载体融合,构建重组表达载体; 取所述重组表达载体转入宿主细胞,获得转化体; 诱导所述转化体表达融合蛋白,经分离纯化,获得高保真DNA聚合酶。 8. 根据权利要求7所述的制备方法,其特征在于,所述DNA分子的核苷酸序列如SEQ ID NO: 2所示。 9. 根据权利要求7所述的制备方法,其特征在于,所述宿主细胞为原核系统宿主细胞。 10. 根据权利要求9所述的制备方法,其特征在于,所述原核系统宿主细胞为大肠杆菌。 Priority Applications (1)Application NumberPriority DateFiling DateTitleCN201310268966.9A CN104250641B (zh)2013-06-282013-06-28一种高保真dna聚合酶及其制备和应用Applications Claiming Priority (2)Application NumberPriority DateFiling DateTitleCN201310268966.9A CN104250641B (zh)2013-06-282013-06-28一种高保真dna聚合酶及其制备和应用PCT/CN2013/079428 WO2014205882A1 (zh)2013-06-282013-07-16一种高保真dna聚合酶及其制备和应用Publications (2)Publication NumberPublication DateCN104250641A CN104250641A (zh)2014-12-31CN104250641B true CN104250641B (zh)2017-09-01ID=52140918Family Applications (1)Application NumberTitlePriority DateFiling DateCN201310268966.9A Active CN104250641B (zh)2013-06-282013-06-28一种高保真dna聚合酶及其制备和应用Country Status (2)CountryLinkCN (1)CN104250641B (zh)WO (1)WO2014205882A1 (zh)Families Citing this family (3)* Cited by examiner, † Cited by third partyPublication numberPriority datePublication dateAssigneeTitleCN106282215A (zh) *2016-08-262017-01-04周辉一种高保真dna聚合酶干粉试剂盒的制备方法CN109957557A (zh) *2017-12-262019-07-02广州市锐博生物科技有限公司Dna聚合酶及其制备方法CN113755465A (zh) *2021-09-232021-12-07武汉爱博泰克生物科技有限公司嵌合体dna聚合酶及其制备方法Citations (4)* Cited by examiner, † Cited by third partyPublication numberPriority datePublication dateAssigneeTitleCN1417338A (zh) *2001-11-062003-05-14杭州华大基因研发中心耐高温dna聚合酶基因序列及编码的多肽和制备方法CN1993468A (zh) *2004-06-042007-07-04宝生物工程株式会社具有dna聚合酶活性的多肽WO2010062776A2 (en) *2008-11-032010-06-03KapabiosystemsChimeric dna polymerasesEP2388322A1 (en) *2009-01-152011-11-23Hokkaido Mitsui Chemicals Inc.Enzymatic preparation containing thermostable dna polymerase, process for producing same, and method for detecting analyte organism
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